SoSe 24: Biologie
Modulangebot 60 LP (Lehramt / Zulassung ab WS23/24 / SPO 2023)
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Genetik und Zellbiologie (Basismodul)
0145cA4.1-
23109ak
Klausur
Klausur Genetik und Zellbiologie (BM) (Daniel Schubert, Stephan Sigrist)
Zeit: 1. Termin: am 17.05.2024, 11:30 2. Termin: am 19.08.2024, 10:00 (Erster Termin: 17.05.2024)
Ort: E-Exam im EEC1 (Fabeckstr. 34-36) /EEC2 (Takustr. 39)
Hinweise für Studierende
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und Zellbiologie
Zusätzl. Angaben / Voraussetzungen
EEC Klausur- Termine: 1. Termin: 17.05.2024, 11:30 Uhr (EEC1 und EEC2) und 13:15 Uhr (EEC2)
2. Termin: 19.08.2024, 10:00 Uhr (EEC2)Kommentar
Wiederholungsregelung:
Informationen zur Wiederholungsregelung und weiteren Regelungen rund um Prüfungen finden Sie hier. -
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Vorlesung
V Genetik und Zellbiologie (Basismodul) (Daniel Schubert, Stephan Sigrist)
Zeit: 1.Block: 15.04. - 13.05.2024; Mo, Mi, Fr; 08:00 - 10:00 Uhr (Erster Termin: 15.04.2024)
Ort: Elisabeth-Schiemann-Hörsaal (R 014) (Königin-Luise-Str. 12 / 16)
Hinweise für Studierende
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Genetik und Zellbiologie (BM)
UN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Zusätzl. Angaben / Voraussetzungen
Ersatztermin für den Mittwoch, 1.5.24 ist Montag, 13.5.24
Kommentar
Inhalt:
In der Vorlesung werden die Grundlagen der klassischen und molekularen Genetik gelehrt. Die Inhalte der Vorlesung sind:
(1) Einführung in die klassische Genetik, Mendelsche Gesetze und erweiterte Vererbungsregeln: Kurze Geschichte der Genetik, Mendelsche Gesetze, dominant-rezessiv, heterozygot-homozygot, monohybrider und dihybrider Erbgang, Phänotyp-Genotyp, Allelie, ungekoppelte Vererbung, Punnett-Schema, Produktregel und Summenregel, gekoppelte Vererbung und Rekombination, Unvollständige Dominanz, Kodominanz, Pleiotropie, Polygenie, Epistasie, Expressivität und Penetranz, Suppression, Modifikation
(2) Nicht-Mendelsche Vererbung: Stammbaumanalysen beim Menschen, geschlechtsgekoppelte Vererbung, Geschlechtsdeterminierung bei Drosophila und Säugern, Extrachromosomale/Cytoplasmatische Vererbung, Letalfaktoren, X-Inaktivierung und Imprinting, Meiotische Drift, Hemizygotie, Komplexe Erbgänge, Stammbaumanalysen beim Menschen
(3) DNA Struktur und Topologie, Chromosomenstruktur: Chromosomentheorie der Vererbung, Transformation (Versuche von Griffith; Avery, MacLeod und McCarty; Hershey und Chase), Zentrales Dogma, DNA- und RNABausteine, Struktur Doppelhelix, DNA-Topologie, Chromosomenstruktur, Nucleosomen, Eu- und Heterochromatin, Histone, Solenoid-Modell, Genomgrößen, Low und high copy DNA
(4) Genome, Zellzyklus und Replikation, Mitose: Zellzyklus, semikonservative Replikation, Ablauf der Replikation bei Pro- und Eukaryoten, Enzymatische Aktivitäten (Primase, DNA-Polymerase, Topoisomerase, etc.), Telomere, Telomerase, Mitose
(5) Meiose und Rekombination, Transposition: Meiose, Crossing Over, synaptonemaler Komplex, Homologe Rekombination, Tetradenanalyse, Holliday-, Meselson-Radding- und DSB-Modelle der Rekombination, Enzymatik der Rekombination, DNA-Mismatch-Reparatur, Konservative sequenzspezifische Rekombination, Genkartierung, Zwei- und Dreifaktorkreuzung; Molekulare MarkerTransposons, Retroviren
(6) Bakterien- und Bakteriophagengenetik: Konjugation, Transformation, Bakteriophagen, allgemeine und spezielle Transduktion, F-Plasmid, Hfr-Stämme
(7) Transkription: Genetischer Informationstransfer, RNA-Typen, RNA Polymerasen, Promotoren, Initiation, Elongation und Termination der Transkription bei Pro- und Eukaryoten, RNA-Prozessierung (Capping, Splicing, Polyadenylierung), RNA-Editing
(8) Regulation der Genexpression: Genregulation bei Prokaryonten: Operator, Repressor, das lac Operon, positive und negative Regulation, Genregulation bei Eukaryonten: Promoterstrukturen, Enhancer, Transkriptionsfaktoren, Histone, Chromatin, Signaltransduktion
(9) Translation: Entschlüsselung des Genetischen Codes, tRNA, Ribosomen, Biochemie der Translation, Unterschiede Pro- und Eukaryonten, Beispiele translationeller Regulation
(10) Mutation und Reparatur: Spontane und induzierte Mutationen, Punktmutationen, Transition/Transversion, Chromosomen- und Genommutationen, Keimbahn- und somatische Mutationen, Mutationsfrequenzen, DNAReparaturmechanismen, Strangbruchreparatur
(11) Populationsgenetik, Quantitative Genetik und Evolution: Phänotyp-, Allel- und Genotypfrequenzen in einer Population, Hardy-Weinberg-Gesetz, Zufallspaarung, Inzucht, quantitative Merkmale, Reaktionsnorm, Selektion, Adaption, Artbildung
(12) Zellbiologie: Zelluläre Kompartimente (u.a. Zellkern, Endoplasmatisches Retikulum, Vakuole, Mitochondrien, Chloroplasten), zelluläre Strukturen, zellulärer Transport, ProteinsortingLiteraturhinweise
(1) Introduction to Genetic Analysis - 11th Edition (2015), Griffiths, Wessler, Carroll, Doebley (Herausgeber), W.H. Freeman / Palgrave Macmillan, ISBN 978-1-4641-0948-5
(2) Genetik - 2. Auflage (2008), Janning & Knust (Herausgeber), Thieme Verlag ISBN 978-3-13-128772-4
(3) Genetik - Taschenlehrbuch (2010), Munk (Herausgeber), Thieme Verlag, ISBN 978-3131448712
(4) Molecular Biology of the Gene - 7th Edition (2013), Watson et al. (Herausgeber), Pearson Education International/Benjamin Cummings/Cold Spring Harbor Press, ISBN 978-0-3218-9656-8 -
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Seminar
S Genetik und Zellbiologie A (Basismodul) (Daniel Schubert, Stephan Sigrist)
Zeit: 1. Block; 16.04. – 07.05.2024; Di; 10:00-12:00 Uhr (Erster Termin: 16.04.2024)
Ort: Blended Learning; Elisabeth-Schiemann-Hörsaal (R 014); online zeitABhängig
Hinweise für Studierende
Blended Learning: Elisabeth-Schiemann-Hörsaal (R 014) (Königin-Luise-Str. 12 / 16) oder zeitABhängig via Webex, ggf. nur online
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und ZellbiologieUN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Kommentar
Im Seminar werden:
(a) die Inhalte der Vorlesung vertieft,
(b) Fragen der Studierenden diskutiert und beantwortet,
(c) beispielhaft (prüfungsrelevante) Fragestellungen und ihre Lösung vorgestellt,
(d) die Grundlagen und Informationsquellen für wissenschaftliche Literaturrecherchen eingeführt. -
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Seminar
S Genetik und Zellbiologie B (Basismodul) (Daniel Schubert, Stephan Sigrist)
Zeit: 1. Block; 17.04. – 13.05.2024; Mi; 10:00-12:00 Uhr (Erster Termin: 17.04.2024)
Ort: Blended Learning; Elisabeth-Schiemann-Hörsaal (R 014); online zeitABhängig
Hinweise für Studierende
Blended Learning: Elisabeth-Schiemann-Hörsaal (R 014) (Königin-Luise-Str. 12 / 16) oder zeitABhängig via Webex, ggf. nur online
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und ZellbiologieUN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Zusätzl. Angaben / Voraussetzungen
ACHTUNG: Ersatztermin für den Mittwoch, 01.05.2024 ist Montag, 13.05.2024.
Kommentar
Im Seminar werden:
(a) die Inhalte der Vorlesung vertieft,
(b) Fragen der Studierenden diskutiert und beantwortet,
(c) beispielhaft (prüfungsrelevante) Fragestellungen und ihre Lösung vorgestellt,
(d) die Grundlagen und Informationsquellen für wissenschaftliche Literaturrecherchen eingeführt. -
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Seminar
S Genetik und Zellbiologie C (Basismodul) (Daniel Schubert, Stephan Sigrist)
Zeit: 1. Block; 19.04. – 10.05.2024; Fr; 10:00-12:00 Uhr (Erster Termin: 19.04.2024)
Ort: Blended Learning; Elisabeth-Schiemann-Hörsaal (R 014); online zeitABhängig
Hinweise für Studierende
Blended Learning: Elisabeth-Schiemann-Hörsaal (R 014) (Königin-Luise-Str. 12 / 16) oder zeitABhängig via Webex, ggf. nur online
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und ZellbiologieUN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Kommentar
Im Seminar werden:
(a) die Inhalte der Vorlesung vertieft,
(b)Fragen der Studierenden diskutiert und beantwortet,
(c) beispielhaft (prüfungsrelevante) Fragestellungen und ihre Lösung vorgestellt,
(d) die Grundlagen und Informationsquellen für wissenschaftliche Literaturrecherchen eingeführt. -
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Praktikum
P Genetik und Zellbiologie A (Basismodul) (Bernadette Eichstädt, Léa Faivre, Astrid Petzoldt, Daniel Schubert)
Zeit: 1. Block; 15.04. - 06.05.2024; Mo; 12:00-19:00 Uhr (Erster Termin: 15.04.2024)
Ort: Praktikumsraum Biologie (R022) (Königin-Luise-Str. 2 / 4)
Hinweise für Studierende
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und Zellbiologie
UN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Zusätzl. Angaben / Voraussetzungen
Insgesamt 4 Termine
Kommentar
Das Praktikum behandelt folgende Themen und Versuche:
1. Woche: Aufbau der DNA, DNA-Isolation, Plasmid-Präparation, Alkalische Lyse, Kochlyse, Restriktionsenzyme (Funktion, gentechnische Verwendung) Restriktionsanalyse eines bakteriellen Plasmids, Agarose-Gelelektrophorese, Erstellen einer Restriktionskarte.
2. Woche: Gesetze Mendels an pflanzlichen Beispielen (Arabidopsis und Mais), gekoppelte Vererbung und Genkartierung mit Hilfe molekularer Marker, statistische Überprüfung der Daten bei genetischen Experimenten.
3. Woche: Populationsgenetik/Humanbiologie und genetische Variabilität: Anwendung des Hardy-Weinberg Gesetzes, PTC-Schmeckertest, Vererbung der AB0-Blutgruppen und Farbsehen.
4. Woche: Genexpressionsanalyse durch Nutzung des LacZ-Reportersystems (Promotorfusion), Optogenetik und Verhaltensänderung in der Fruchtfliege, Präparation und Analyse von Chromosomen aus Drosophila-Gewebe (Polytänie). -
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Praktikum
P Genetik und Zellbiologie B (Basismodul) (Bernadette Eichstädt, Léa Faivre, Astrid Petzoldt, Daniel Schubert)
Zeit: 1. Block; 16.04. – 07.05.2024; Di; 12:00-19:00 Uhr (Erster Termin: 16.04.2024)
Ort: Praktikumsraum Biologie (R022) (Königin-Luise-Str. 2 / 4)
Hinweise für Studierende
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und Zellbiologie
UN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Kommentar
Das Praktikum behandelt folgende Themen und Versuche:
1. Woche: Aufbau der DNA, DNA-Isolation, Plasmid-Präparation, Alkalische Lyse, Kochlyse, Restriktionsenzyme (Funktion, gentechnische Verwendung) Restriktionsanalyse eines bakteriellen Plasmids, Agarose-Gelelektrophorese, Erstellen einer Restriktionskarte.
2. Woche: Gesetze Mendels an pflanzlichen Beispielen (Arabidopsis und Mais), gekoppelte Vererbung und Genkartierung mit Hilfe molekularer Marker, statistische Überprüfung der Daten bei genetischen Experimenten.
3. Woche: Populationsgenetik/Humanbiologie und genetische Variabilität: Anwendung des Hardy-Weinberg Gesetzes, PTC-Schmeckertest, Vererbung der AB0-Blutgruppen und Farbsehen.
4. Woche: Genexpressionsanalyse durch Nutzung des LacZ-Reportersystems (Promotorfusion), Optogenetik und Verhaltensänderung in der Fruchtfliege, Präparation und Analyse von Chromosomen aus Drosophila-Gewebe (Polytänie). -
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Praktikum
P Genetik und Zellbiologie C (Basismodul) (Bernadette Eichstädt, Léa Faivre, Astrid Petzoldt, Daniel Schubert)
Zeit: 1. Block; 17.04. – 08.05.2024; Mi; 12:00-19:00 Uhr Ersatztermin für 01.05.2024: Mo 13.05.2024 (Erster Termin: 17.04.2024)
Ort: Praktikumsraum Biologie (R022) (Königin-Luise-Str. 2 / 4)
Hinweise für Studierende
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und Zellbiologie
UN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Zusätzl. Angaben / Voraussetzungen
Ersatztermin für 01.05.2024: Mo 13.05.2024
Kommentar
Das Praktikum behandelt folgende Themen und Versuche:
1. Woche: Aufbau der DNA, DNA-Isolation, Plasmid-Präparation, Alkalische Lyse, Kochlyse, Restriktionsenzyme (Funktion, gentechnische Verwendung) Restriktionsanalyse eines bakteriellen Plasmids, Agarose-Gelelektrophorese, Erstellen einer Restriktionskarte.
2. Woche: Gesetze Mendels an pflanzlichen Beispielen (Arabidopsis und Mais), gekoppelte Vererbung und Genkartierung mit Hilfe molekularer Marker, statistische Überprüfung der Daten bei genetischen Experimenten.
3. Woche: Populationsgenetik/Humanbiologie und genetische Variabilität: Anwendung des Hardy-Weinberg Gesetzes, PTC-Schmeckertest, Vererbung der AB0-Blutgruppen und Farbsehen.
4. Woche: Genexpressionsanalyse durch Nutzung des LacZ-Reportersystems (Promotorfusion), Optogenetik und Verhaltensänderung in der Fruchtfliege, Präparation und Analyse von Chromosomen aus Drosophila-Gewebe (Polytänie). -
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Praktikum
P Genetik und Zellbiologie D (Basismodul) (Bernadette Eichstädt, Léa Faivre, Astrid Petzoldt, Daniel Schubert)
Zeit: 1. Block; 18.04. – 09.05.2024; Do; 12:00-19:00 Uhr Ersatztermin für 09.05.2024: Di 14.05.2024 (Erster Termin: 18.04.2024)
Ort: Praktikumsraum Biologie (R022) (Königin-Luise-Str. 2 / 4)
Hinweise für Studierende
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und Zellbiologie
UN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Zusätzl. Angaben / Voraussetzungen
Ersatztermin für 09.05.2024: Di 14.05.2024
Kommentar
Das Praktikum behandelt folgende Themen und Versuche:
1. Woche: Aufbau der DNA, DNA-Isolation, Plasmid-Präparation, Alkalische Lyse, Kochlyse, Restriktionsenzyme (Funktion, gentechnische Verwendung) Restriktionsanalyse eines bakteriellen Plasmids, Agarose-Gelelektrophorese, Erstellen einer Restriktionskarte.
2. Woche: Gesetze Mendels an pflanzlichen Beispielen (Arabidopsis und Mais), gekoppelte Vererbung und Genkartierung mit Hilfe molekularer Marker, statistische Überprüfung der Daten bei genetischen Experimenten.
3. Woche: Populationsgenetik/Humanbiologie und genetische Variabilität: Anwendung des Hardy-Weinberg Gesetzes, PTC-Schmeckertest, Vererbung der AB0-Blutgruppen und Farbsehen.
4. Woche: Genexpressionsanalyse durch Nutzung des LacZ-Reportersystems (Promotorfusion), Optogenetik und Verhaltensänderung in der Fruchtfliege, Präparation und Analyse von Chromosomen aus Drosophila-Gewebe (Polytänie). -
23111e
Praktikum
P Genetik und Zellbiologie E (Basismodul) (Bernadette Eichstädt, Léa Faivre, Astrid Petzoldt, Daniel Schubert)
Zeit: 1. Block; 19.04. – 10.05.2024; Fr; 12:00-19:00 Uhr (Erster Termin: 19.04.2024)
Ort: Praktikumsraum Biologie (R022) (Königin-Luise-Str. 2 / 4)
Hinweise für Studierende
Zusätzliche Modulinfos: Modulbeschreibung Basismodul Genetik und Zellbiologie
UN Sustainable Development Goals (SDGs): 15
Kommentar
Das Praktikum behandelt folgende Themen und Versuche:
1. Woche: Aufbau der DNA, DNA-Isolation, Plasmid-Präparation, Alkalische Lyse, Kochlyse, Restriktionsenzyme (Funktion, gentechnische Verwendung) Restriktionsanalyse eines bakteriellen Plasmids, Agarose-Gelelektrophorese, Erstellen einer Restriktionskarte.
2. Woche: Gesetze Mendels an pflanzlichen Beispielen (Arabidopsis und Mais), gekoppelte Vererbung und Genkartierung mit Hilfe molekularer Marker, statistische Überprüfung der Daten bei genetischen Experimenten.
3. Woche: Populationsgenetik/Humanbiologie und genetische Variabilität: Anwendung des Hardy-Weinberg Gesetzes, PTC-Schmeckertest, Vererbung der AB0-Blutgruppen und Farbsehen.
4. Woche: Genexpressionsanalyse durch Nutzung des LacZ-Reportersystems (Promotorfusion), Optogenetik und Verhaltensänderung in der Fruchtfliege, Präparation und Analyse von Chromosomen aus Drosophila-Gewebe (Polytänie).
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23109ak
Klausur